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MALDI(基质辅助激光解吸电离,Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization)

MALDI 是最早、也是目前应用最广的软电离技术之一,以「基质吸收激光能量、带动待测分子解吸并软电离」为核心机制。在质谱成像中,MALDI 是提及率最高的成像离子源,擅长蛋白、多肽、脂质与糖类的组织分布分析。
本文目录
一、工作原理二、在质谱成像中的应用三、空间分辨率与改进构型四、局限与注意五、与其它成像源的配合
MALDI:基质共结晶 + 激光解吸电离 切片 + 基质共结晶 激光 解吸电离 质量分析 基质吸收激光能量并带动待测分子软电离;需真空环境
MALDI(基质辅助激光解吸电离,Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization) 示意图

一、工作原理

MALDI 在样品(常与待测物混合)表面均匀喷涂一层有机基质(如 DHB、CHCA),干燥后形成基质-分析物共结晶。脉冲激光照射时,基质吸收光子能量并迅速汽化,带动共结晶中的待测分子解吸进入气相,并在过程中发生软电离,生成准分子离子。由于能量主要由基质吸收,待测分子得以较完整地保留分子离子信息。

激光解吸产生的离子被质量分析器(多为 TOF 或 MALDI-TOF)采集,每个激光作用点对应一张全质谱。在成像模式下,激光按栅格逐点扫描组织切片,即可重构分子的空间分布。基质的种类、浓度、喷涂均匀度与共结晶质量,直接决定信号强度与图像重复性。

二、在质谱成像中的应用

MALDI 成像是空间蛋白质组与脂质组的重要工具,广泛用于肿瘤组织分子分型、药物分布、脑与植物组织代谢/脂质映射等。其高通量(TOF 快采集)、宽质量覆盖与成熟软件生态,使其在组织尺度成像中占据主导地位。

常用基质各有侧重:DHB(2,5-二羟基苯甲酸)常用于脂质与代谢物、背景相对可控;CHCA(α-氰基-4-羟基肉桂酸)常用于蛋白与多肽。基质选择需结合目标分子质量区与背景表现反复优化。

三、空间分辨率与改进构型

常规 MALDI 成像多在真空下进行,空间分辨率通常处于数十微米量级,足以回答组织微区层面的问题。为进一步提升性能,出现了多种改进构型:AP-SMALDI(常压 MALDI)将制备移至常压,简化流程;t-MALDI(透射模式)从样品背面入射激光,减少表面电荷积累、提升离子产额;MALDI-2 / t-MALDI-2 引入后电离(真空紫外光再次电离中性解吸物),显著提升灵敏度。

构型特点主要收益
常规 MALDI真空、需基质成熟、覆盖广
AP-SMALDI常压、需基质简化制备
t-MALDI背面入射激光离子产额提升
MALDI-2后电离增敏灵敏度提升

四、局限与注意

MALDI 的主要局限来自基质本身:基质峰大量出现在低质量区(m/z < 500),与药物、代谢物等小分子区重叠,造成背景干扰;样品需真空、需喷涂与冻存切片,前处理是主要成本与变异来源。此外不同组织、不同批次的基质结晶一致性,需要方法学严格控制。

针对「小分子基质干扰」,业界发展出免基质路线(如新策源 LDPI 通过激光/光化学电离实现无需喷涂基质)、特殊低背景基质或纳米结构表面等缓解方案。若研究重点是药物/代谢物小分子,应优先考虑免基质或低背景策略。

五、与其它成像源的配合

MALDI 并非孤立存在。在实际项目中,常以 MALDI 负责蛋白/脂质大范围成像,以 DESI 或 LDPI 补足常压免基质的小分子覆盖,以 SIMS 攻克纳米级元素/小分子问题。多源互补已成为复杂组织系统级解析的常态。

对于已拥有主流质谱(Agilent/SCIEX/Thermo)的用户,若希望在不更换主机的前提下补充免基质常压成像能力,可评估新策源 LDPI/DPI 外接方案,与既有 MALDI 路线形成互补。

质谱成像典型输出:脑组织多 m/z 离子图矩阵
图:小鼠脑组织质谱成像 5×4 离子图矩阵(25 个 m/z 通道),展示 MSI 典型数据产出形式——每种离子对应一张空间分布热图。数据来源:新策源官网。

常见问题(FAQ)

MALDI 离子源的工作原理是什么?
样品与有机基质共结晶后,脉冲激光使基质吸收能量并带动待测分子解吸软电离,离子进入质量分析器被采集。
DHB 和 CHCA 分别适合测什么?
DHB 常用于脂质与代谢物、背景较可控;CHCA 常用于蛋白与多肽。具体需结合目标质量区优化。
MALDI 成像为什么需要基质?
基质吸收激光能量以保护待测分子并带动其解吸电离;但也因此带来低质量区背景干扰。
有没有不需要基质的 MALDI 类方案?
有。免基质思路(如新策源 LDPI 的激光/光化学电离)或纳米结构表面等可省去有机基质,降低小分子背景。

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